Стерилизация хирургических инструментов методы стерилизации хирургических инструментов стерилизация. Термические методы стерилизации медицинских инструментов. Стерилизация методом кипячения. Сухожаровой шкаф. Автоклав медицинский Хирургические инструменты

Стерилизация хирургических инструментов

хирургический автоклавирование антисептический

Стерилизация хирургического инструментария осуществляют кипячением, автоклавированием и антисептическими веществами. Нережущие инструменты стерилизуют кипячением в 1-2% растворе гидрокарбоната натрия, который препятствует окислению металла и повышает температуру кипения. Можно кипятить инструменты в дистиллированной воде. Инструменты, вымытые щеткой с мылом и высушенные после предыдущей операции, опускают в воду на сетке в специальные металлические сосуды - стерилизаторы, размеры которых варьируют в зависимости от количества и размера инструментов. Время кипячения инструментов - 30 мин. Если инструменты ранее использовали при гнойной операции, а особенно, если произошло их загрязнение анаэробными микробами или синегнойной палочкой, время кипячения увеличивается до 45 мин. или даже их кипятят троекратно по 60 мин. со сменой воды. Такие инструменты перед кипячением на несколько часов погружают в насыщенный раствор борной кислоты (при загрязнении синегнойной палочкой) или в раствор лизоформа. Кипячение инструментов, предназначенных для «чистых» и для гнойных операций, производят в отдельных стерилизаторах. Инструменты можно стерилизовать уложенными в биксы или завернутыми в простыни в автоклаве в течение 30 мин. при давлении 2 am. Применяют также суховоздушную стерилизацию в сушильных шкафах при t° 180 - 200° в течение 40 мин. В экстренных случаях допускается стерилизация инструментов обжиганием. Уложив в металлический лоток, их обливают спиртом, который поджигают. Но от такой стерилизации инструменты портятся, да и метод не является надежным.

Режущие инструменты при кипячении в воде тупятся, поэтому их стерилизуют холодным способом. После мытья щеткой с мылом их погружают на 2 часа в 96% спирт. Спирт меньшей концентрации вызывает ржавчину. Можно использовать растворы следующего состава: карболовой кислоты - 3 части, едкого натра - 15 частей, формалина - 20 частей, дистиллированной воды - 1000 частей; формалина - 20 частей, фенола чистого жидкого - 1,5 части, карбоната натрия - 7,5 части, воды дистиллированной - 500 частей. Стерилизация в этих растворах менее надежна, возможно образование ржавчины, поэтому их применение может быть рекомендовано только при отсутствии спирта. Экспозиция та же, что и при стерилизации спиртом. Шприцы стерилизуют кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин. Цилиндры и поршни кипятят отдельно, завернутыми в марлю. Если шприцы изготовлены из жаростойкого стекла, выдерживающего температуру свыше 200°, наилучшей является стерилизация суховоздушным способом при t° 200° в течение 30 мин. Иглы кипятят с мандренами либо заполнив водой при помощи шприца. Иначе в их просвете сохраняется воздух, который препятствует поступлению воды (воздух, нагретый до t° 100°, не обеспечивает стерильность). Новые иглы очищают от смазки и трижды по 20 мин. кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия, каждый раз меняя воду. Затем их на два часа укладывают в бензин и вновь дважды кипятят в 2% растворе гидрокарбоната натрия. Хранят иглы сухими, с мандренами. Шприцы в разобранном виде и иглы могут храниться в 96% спирте в специальных металлических пеналах или в стеклянном сосуде. Использование одного и того же шприца и иглы для нескольких лиц может повести к передаче эпидемического гепатита, даже если инструменты кипятят перед каждой инъекцией. Надежным средством профилактики служит система централизованной стерилизации, при которой каждый шприц и иглу после однократного использования возвращают в стерилизационную для специальной обработки. Последняя включает промывку 10% раствором сульфата магния при t° 45-50° (иглы промывают при помощи специально выделенного шприца) и погружение в этот же раствор на 15 мин. Затем следует тщательная промывка дистиллированной водой, кипячение в ней в течение 5 минут и только потом стерилизация - суховоздушная или в автоклаве (каждый шприц с иглами - в отдельной упаковке).

Стерилизация систем для внутривенного переливания жидкостей и крови и для внутриартериального нагнетания крови начинают с подготовки резиновых трубок. Их промывают проточной водой для удаления талька и замачивают на 6-8 час. в растворе гидрокарбоната натрия (двууглекислой соды) - 100 г., нашатырного спирта - 50 мл, воды - 10 л. После повторного промывания проточной водой их кипятят в дистиллированной воде 30 мин. и сушат. Стеклянные части - контрольные стекла и капельницы - промывают соляной кислотой или 10% раствором двухромовокислого калия в серной кислоте и многократно - проточной водой. Системы монтируют, укладывают в биксы или мешки из плотной ткани и стерилизуют в автоклаве в течение 30-40 минут при 2 am. Резиновые трубки более 3 раз стерилизовать не следует, так как они теряют эластичность и прочность. В порядке исключения можно стерилизовать системы кипячением в дистиллированной воде в течение 45 мин.

Стерилизация анестезиологических принадлежностей - интубационных трубок (резиновых и пластмассовых), съемных надувных манжеток и масок - осуществляют холодным способом. От кипячения они портятся, теряют эластичность. Применяют растворы дийодида (двуйодистой) ртути 1:1000, водно-спиртовой раствор формальдегида, водно-спиртовой раствор левомицетина 1:1000 или один из растворов, применяющихся для стерилизации режущих инструментов. Раствор наливают в высокий широкий цилиндр, закрывающийся крышкой с отверстиями по диаметру трубки. Их помещают в цилиндр вертикально так, чтобы снаружи через отверстия выступал отрезок длиной 1,5-2 см. В растворе трубки выдерживают не менее 1 часа после тщательной механической очистки их от слизи и гноя. Для этого трубки соединяют с водопроводным краном и в течение 15-30 мин. промывают сильной струей воды, а затем протирают изнутри и снаружи тампоном, смоченным в эфире. Трубки можно стерилизовать в автоклаве в течение 30 мин. при давлении 1,5 am. Их укладывают в бикс, стенки которого обкладывают марлей или полотенцем. Внутреннюю поверхность масок и клинки ларингоскопов моют 0,5% раствором нашатырного спирта и несколько раз протирают салфеткой, смоченной 96% спиртом. Металлические части - переходные трубки, щипцы, зубные распорки - стерилизуют кипячением. Приборы для эндоскопии стерилизуют без оптики погружением в раствор оксицианида ртути 1: 2000 или цианида ртути 1:5000 на 6 часов. Предварительно их моют теплой водой с мылом и после просушивания протирают спиртом. Оптическую часть тщательно протирают спиртом и сохраняют в сухом марлевом колпачке. Мочеточниковые катетеры и эластические бужи, сделанные из шелка и пропитанные особым лаком, стерилизуют парами формалина в стеклянном или металлическом контейнере, на дне которого расположен сосуд с жидким формалином или формалиновыми таблетками. Металлические бужи и катетеры стерилизуют кипячением.

Стоматологический инструментарий стерилизуют кипячением или в суховоздушной камере при t° 120° в течение 30-40 мин. Сшивающие аппараты перед стерилизацией очищают от вазелинового масла, которым их смазывают после пользования, собирают, заряжают. Стерилизацию проводят кипячением в дистиллированной воде в собранном и заряженном виде. Вместе с аппаратом кипятят заряженные запасные магазины с танталовыми скрепками. Если в аппарате есть режущие части, их стерилизуют отдельно по правилам стерилизации режущих инструментов.

Стерилизация изделий из синтетических материалов: сосудистых протезов из лавсана, терилена, тафлона, найлона и дакрона, а также сеток из этих материалов - производят кипячением в дистиллированной воде в течение 30 мин. с последующим погружением их на несколько минут в спирт и промыванием физиологическим раствором. Стандартные протезы поступают с завода стерильными в специальной упаковке. Изделия из стекла стерилизуют в автоклаве при давлении 2 am в течение 20 мин. или кипячением в дистиллированной воде - 30 мин., или в суховоздушной камере при t° 150-160° - 1 час. Подготовку к стерилизации мягкого шовного материала (шелка, кетгута, капрона, лавсана, волоса) и его стерилизацию осуществляют в операционной.

Для обработки шелка применяют метод Кохера: шелк моют мылом в теплой воде, прополаскивают, пока вода не станет чистой, и высушивают в стерильном полотенце. Для этой и последующих манипуляций медсестра одевается, как на операцию. Вымытый шелк наматывают на предметные стекла, катушки или марлевые валики и погружают последовательно для обезжиривания в эфир на 12-24 часа и в 70% спирт на такое же время. Затем после 10-минутного кипячения в растворе сулемы 1:1000 шелк помещают для хранения в 96% спирт в банки с притертыми пробками. Перед операцией необходимое количество шелка кипятят 2 мин. в растворе сулемы 1: 1000.

Часто применяют модификации способа Кохера.

• 1. Способ Бакулева: шелк в мотках стирают в 0,5% растворе нашатырного спирта, высушивают и погружают для обезжиривания на 1 сутки в эфир. Стерилизуют шелк в автоклаве в течение 30 минут. Хранят в 96% спирте в стерильных банках с притертыми Пробками.
• 2. После стирки, намотки на катушки, обезжиривания в эфире и 70% спирте и кипячения в растворе сулемы 1: 1000 (№0-4 в течение 15 мин., №5-8 в течение 30 мин.) шелк помещают на 3 суток в 96% спирт, затем производят его бактериологическое исследование (посев) и заливают для хранения 96% спиртом.
• 3. Постиранный, намотанный на катушки и обезжиренный шелк стерилизуют в автоклаве 15 мин. под давлением 2 am и помещают на 5 суток в 96% спирт. После контроля посевом шелк готов к употреблению. Стерилизация в автоклаве уменьшает прочность шелка. Каждые 10 дней спирт, в котором хранится шелк, меняют, а стерильность шелка проверяют посевом.

Капроновые и лавсановые нити стерилизуют в автоклаве 15 мин. под давлением 2 am, помещают в 96% спирт на 5 суток, затем производят посев. Хранят в 96% спирте. Допускается стерилизация кипячением в воде (20 мин.), а затем в растворе сулемы 1:1000 (5 мин.), а также способами, предложенными для стерилизации шелка. Капроновые и лавсановые нити выдерживают любое число кипячений, в том числе и в сулеме.

Бумажные и льняные нити стерилизуют, как шелк, или автоклавируют вместе с перевязочным материалом и бельем.

Кетгут требует более сложной стерилизации в связи с тем, что его изготовляют из чрезвычайно инфицированного материала - кишок овец, а кипячения и автоклавирования он не переносит. Стерилизация кетгута по способу Ситковского: кетгут обезжиривают в эфире в течение 12-24 час, протирают нити тампоном, смоченным в растворе сулемы 1: 1000, опускают в 2% водный раствор калия йодида (№0-1 на 30 сек., №2-5 на 1 мин., №6 на 2 мин.), а затем смотанный в кольца кетгут помещают в подвешенном состоянии в банку с притертой и залитой парафином пробкой на расстоянии 6-7 см от дна, где находится сухой йод (в 3-литровой банке - 40 г., в 5-литровой банке - 60 г.). Периодически банки слегка встряхивают для равномерного доступа паров йода ко всем моткам кетгута. Кетгут считают простернлизованным №0-1 - через 3 суток, №2-4 - через 4 суток, №5-6 - через 5 суток и после посева укладывают в сухие стерильные банки с притертыми пробками.

Способ Клаудиуса: в течение 14 дней кетгут выдерживают в растворе: 1000 мл дистиллированной воды, 10 г. чистого йода и 10 г. калия йодида. Воду можно заменить формалиновым спиртом 1: 1000.

Имеются и др. модификации способа Клаудиуса: свернутые в кольца нити кетгута обезжиривают в эфире 1 сутки и на 14 дней помещают в раствор 1000 мл чистого спирта, 10 г. йода и 10 г. калия йодида, меняя этот раствор через 7 дней. Затем производят бактериологический контроль и хранят в этом же растворе со сменой его каждые 7-10 дней. Это один из наиболее принятых в СССР способов. Кетгут можно стерилизовать в растворе следующего состава: 1000 мл дистиллированной воды, 20 г. калия йодида и 10 г. чистого йода. Свернутый в кольца кетгут помещают в раствор дважды на 8-10 суток после выдерживания его в течение 12-24 час. в эфире, а затем на 4- 6 суток - в 96% спирт. После бактериологического посева кетгут хранят в 96% спирте, который меняют каждые 7-10 суток.

Стерилизация – это процесс устранения всех форм жизни, в том числе и инфекционных агентов (грибы, бактерии, споры, вирусы), которые присутствуют на поверхностях, содержатся в жидкостях.

Подвергаться обязательной стерилизации должны:

Предметы, которые соприкасаются с поверхностью ран, имеют контакт с кровью и инъекционными препаратами

Диагностическая аппаратура, которая соприкасается со слизистыми оболочками и может вызвать их повреждение.

Выделяют три основных этапа стерилизации:

Дезинфекция

Предстерилизационная очистка

Стерилизация

Стерилизация достигается путем применения термической, химической или радиоактивной обработки.

Качество стерилизации во многом зависит от контакта стерилизующего агента с поверхностью стерилизуемого инструмента. Выбор агента связан с природой инструмента, который необходимо стерилизовать.

Процесс стерилизации происходит в специальном устройстве, которое называется стерилизатор .

Методы стерилизации

1) Термический метод стерилизации

- Паровая стерилизация (автоклавирование)

При термической обработке гибнут живые организмы. Этот процесс ускоряется при добавлении влаги, но обычного пара недостаточно для стерилизации. Необходимо давление, больше атмосферного, что позволит повысить температуру пара для термического разрушения микробной жизни. Пар под давлением вызывает денатурацию и коагуляцию белка и его ферментов в клетках.

Устройство, в котором происходит стерилизация паром, называется автоклав. Весь цикл стерилизации в автоклаве может занять от 15 до 60 минут, в зависимости от давления, температуры и материала стерилизуемых инструментов.

Автоклавирование подходит для предметов, которые переносят влажность, высокое давление (от 1 до 3,5 атмосфер выше внешней среды), а также высокую температуру (от + 121°С до + 148 °C). Например, хирургические инструменты.

Отличным представителем устройств для паровой стерилизации является серия автоклавов Statim . Компактные кассетные стерилизаторы продлевают срок службы хрупких инструментов.

- Воздушная стерилизация (сухожаровой шкаф)

Сухое тепло в виде горячего воздуха используется в основном для стерилизации объектов на основе безводных масел, нефтепродуктов и порошков, что не может быть стерилизовано посредством пара и газа. Гибель микробных организмов происходит за счет окисления и медленного процесса сжигания белка в клетках. При отсутствии влаги в процессе стерилизации требуются более высокие температуры.

- Микроволновая стерилизация

Под действием не ионизирующих излучение микроволн, создаются гипертермические условия, которые нарушают жизненные процессы микроорганизмов. Температура цикла ниже, чем при стерилизации паром. Время цикла гораздо меньше – 30 секунд. Металлические инструменты могут быть стерилизованы, если их поместить в условия частичного вакуума, в стеклянной емкости. Стерилизатор такого типа отлично подойдет для небольших объемов стерилизации.

2) Химический метод стерилизации

- Стерилизация газом

Окись этилена. Основной цикл стерилизации состоит из пяти этапов и занимает около 2,5 часов, за исключением времени аэрации. Газ вступает в химическую реакцию с аминокислотами, белками, ДНК и предотвращает размножение микробных организмов.

Такой метод стерилизации подходит для предметов, которые не могут выдержать высокую температуру и влажность, необходимую для паровой стерилизации. Благодаря низким температурным условиям (+ 30 ° до + 60 ° C), данный метод стерилизации хорошо подходит для медицинских устройств со встроенной электроникой. Недостаток метода – легкая воспламеняемость.

Формальдегид. Газ убивает микроорганизмы путем коагуляции белка в клетках. Данный метод стерилизации является сложным и менее эффективным, чем другие методы стерилизации. От его использования для стерилизации почти отказались в Соединенных Штатах, Канаде и Австралии, но он до сих пор используется в некоторых странах Европы и Азии.

- Плазменная стерилизация

Плазма представляет собой состояние вещества отличное от твердого, жидкого или газообразного состояния. Это состояние достигается за счет создания сильного электрического или магнитного поля. Свободные радикалы перекиси водорода взаимодействуют с клеточными мембранами, ферментами, нуклеиновыми кислотами и нарушают жизненные функции микроорганизмов.

Основной цикл плазменной стерилизация состоит из четырех этапов (создание вакуума, Н2О2 инъекция, диффузия, плазменный разряд). Процесс занимает от 1 до 3 часов.

Данный метод стерилизации подходит для объектов, которые не могут выдержать высокую температуру и влажность, необходимую для паровой стерилизации.

- Стерилизация озоном

Озон является формой кислорода. Процесс стерилизации происходит посредством окисления, разрушения органических и неорганические веществ. Озон проникает в мембрану клетки, вызывая ее взрыв. Озон является нестабильным газом, но может быть легко генерирован из кислорода. Время цикла - до 60 минут в зависимости от размера камеры или нагрузки.

3) Радиационный метод стерилизации

Является наиболее эффективным методом стерилизации, но ограничивается только использованием в коммерческих целях.

Ионизирующее излучение производит ионы, которые выбивают электроны из атомов. Эти электроны ударяют смежный атом и либо присоединяются, либо выбивают электрон из второго атома. Ионная энергия преобразуется в тепловую и химическую энергию. Эта энергия вызывает гибель микроорганизмов путем разрушения молекулы ДНК, что предотвращает клеточное деление и распространение биологической жизни. Основными источниками ионизирующего излучения являются бета-частицы и гамма-лучи.

Каждый метод стерилизации имеет свои особенности. При выборе того или иного метода, следует учитывать возможные побочные эффекты, особенно когда речь идет о стерилизации различных электронных устройств.

Стерилизация проводится в два этапа: первый этап - пред- стерилизационная обработка: второй - непосредственная стерилизация.

Предстерилизационная подготовка включает обеззараживание, мытье и высушивание. В связи с высокой опасностью распространения СПИДа и выполнения операций у больных, перенесших гепатит, правила предстерилизационной подготовки изменены и приравнены к способам обработки инструментов, предусматривающим гарантию уничтожения вируса иммунодефицита человека. Инструменты после гнойных операций при анаэробной инфекции, больных, перенесших в течение 5 последних лет гепатит, а также при риске СПИДа обрабатывают отдельно от других. Сразу после операции инструменты погружают в дезинфицирующие средства:

• - 3%-ный раствор хлорамина на 40-60 мин или 6%-ный раствор водорода:
• - пероксида - на 90 мин, 0,5%-ный раствор полидеза - на 60 мин, комбинированный дезинфектант инструментария - на 60 мин.

После обеззараживания инструменты переносят в моющий раствор (вода, стиральный порошок и водорода пероксид) при температуре 50°С на 20 мин, затем каждый инструмент моют щеткой в разобранном виде и промывают под проточной водой. Этапы и режимы очистки инструментария представлены в табл. 1.

Таблица 1

Этапы и режимы предстерилизационной очистки инструментария, совмещенной с дезинфекцией инкрасептом 10 А

Качество предстерилизационной обработки проверяется путем постановки азопирамовой, фенолфталеиновой и бензиди- новой проб на наличие остаточных компонентов моющего средства. крови и жира. Контролю подлежит не менее 1% от партии инструментов, одновременно подвергшихся обработке. Наиболее удобен промышленный индикатор - запаянные трубочки, внутри которых находится порошок - смесь сахарозы и винной кислоты, при 180°С порошок становится жидкостью.

Кроме того, контроль качества предстерилизационной обработки проводится центром Эпидсаннадзора раз в квартал. При положительной пробе вся партия инструментов подвергается повторной предстерилизационной обработке.

Следующий этап - высушивание инструментов в сухожаровом шкафу при температуре 80°С в течение 20 мин.

Выбор метода стерилизации зависит от вида хирургических инструментов, подлежащих стерилизации.

Все общехирургические инструменты условно разделяют на четыре группы:

• 1) металлические - режущие (скальпели, ножницы, иглы шовные и др.);
• 2) нережущие: шприцы, инъекционные иглы, зажимы и т. д.;
• 3) резиновые и пластмассовые: катетеры, зонды, дренажи и т. д.;
• 4) оптические: лапароскопы, гастроскопы, цистоскопы и т. д.

Стерилизация хирургических металлических инструментов

и изделий из стекла производится следующими способами:

Стерилизация сухим горячим воздухом - аэростерилизация, осуществляется в сухожаровых шкафах. Инструменты и шприцы в разобранном виде помещают в специальные металлические сетки или упаковывают в крафт-бумагу и стерилизуют при температуре 180-200°С в течение 1 ч. Изделия, про- стерилизованные в крафт-бумаге, сохраняются стерильными 3 суток, а в открытых сетках должны использоваться непосредственно после стерилизации. Для проверки стерилизации наиболее удобен промышленный индикатор - запаянные трубочки, внутри которых находится порошок - смесь сахарозы и винной кислоты, при 180°С порошок становится жидкостью.

Для стерилизации паром инструменты помещают в коробку (рис. 1) Шиммельбуша. Емкость плотно закрывается крышкой, которая прикреплена к корпусу коробки петлей, и закрывается замком. По периметру коробки имеются отверстия, которые открываются и закрываются с помощью подвижного металлического пояса, укрепляющегося с помощью специального замка. Биксы загружают в автоклавы и стерилизуют при давлении 1,1 атм - 60 мин, 1,5 атм - 45 мин, 2 атм - 30 мин. Сроки хранения в биксах с фильтром - 3 сут. , без фильтра - 24 ч. Стерилизуемый материал укладывают в коробки нетуго с тем, чтобы пар свободно проникал ко всему содержимому.

Рис. 1.

Стерилизация инструментов одноразового пользования проводится в герметичных пакетах ионизирующим излучением (улучи), ультрафиолетовыми лучами и ультразвуком. В настоящее время предпочтение отдают стерилизации у-лу- чами. Для этих целей применяют изотопы 60 Со и |37 С. Стерилизация должна производиться с соблюдением мер безопасности в заводских условиях. При сохранении герметичности упаковок, в которых призводилась стерилизация у-луча- ми, стерильность сохраняется в течение 5 лет.

Получают распространение стерилизационные коробки, снабженные антибактериальными фильтрами (КСПФ), у которых срок хранения стерильного материала может быть увеличен до 1 мес. Если коробку открывали, находящийся в ней стерильный материал может использоваться только в течение этого дня.

Кипячение как метод стерилизации в настоящее время не применяется и относится к дезинфекции.

Стерилизация режущих и колющих инструментов осуществляется в заводских условиях у-лучами, газовым и холодным химическим способом с применением антисептиков. В перевязочных режущие и колющие инструменты стерилизуются в сухожаровых шкафах.

К химическим методам стерилизации относится стерилизация в стерилизационных камерах воздушного одно- или двухкамерного стерилизатора емкостью 80 дм 3 и более парами формалина.

На дно камеры помещают формалин из расчета 10 г на 10 дм 3 камеры, время стерилизации -16 ч. Химическим газовым способом стерилизуются инструменты, имеющие эбонитовую основу: телескопы, все лапароскопические инструменты, инструменты, имеющие оптику, особо точные и дорогостоящие инструменты.Перед газовой стерилизацией лапароскопические инструменты подвергаются дезинфекции в 3%-ном растворе альдезона путем промывания в одной емкости. Затем во второй емкости они замачиваются на 1 ч и по истечении времени ополаскиваются под проточной водой от дезинфицирующих средств.

Химическая стерилизация проводится с применением жидких антисептиков: тройного раствора 96%-ного этилового спирта, 6%-ного раствора водорода пероксида, комбинированного дезинфектанта, аламинола, бионола, лизацина. Инструмент погружают в один из перечисленных дезинфектантов согласно инструкции по их использованию.

Резиновые трубки, катетеры, дренажи перед стерилизацией промывают проточной водой, выдерживают в течение часа в 1 %-ном растворе хлорамина, вновь промывают проточной водой и высушивают. Затем их заворачивают в марлю и стерилизуют при давлении в 1 атм в течение 45 мин.

Стерилизация перчаток для многоразового применения проводится после их предстерилизационной обработки. Использованные перчатки моют под проточной водой с мылом, дезинфицируют в 1 %-ном растворе хлорамина или других антисептиках в течение 30 мин, прополаскивают под проточной водой, сушат, проверяют на герметичность, пересыпают тальком, заворачивают по одной парами в марлевые салфетки, закладывают в биксы и стерилизуют в автоклаве при давлении в 1,1 атм в течение 30 мин или 1,5 атм -1 5 мин.

Для хирургических манипуляций перчатки подвергают дезинфекции одним из следующих методов:

• 1) в 4,8%-ном растворе первомура - 20 мин;
• 2) в растворе водорода пероксида при 50°С - 180 мин;
• 3) в 96%-ном растворе спирта - 1 5 мин;
• 4) в 10%-ном растворе роккала - 30 мин;
• 5) в 2%-ном растворе хлорамина - 2 ч.

После дезинфекции перчатки промывают дважды в дистиллированной воде.

Стерилизация изделий из резины, пластмассы может осуществляться в автоклавах паром под давлением 1.1 атм - 30 мин или 1,5 атм -1 5-20 мин. Резиновые и пластмассовые изделия разового использования стерилизуют в заводских условиях у-лучами.

Обработка всех инструментов включает последовательное выполнение двух этапов: предстерилизационной обработки и собственно стерилизации. Способ стерилизации прежде всего зависит от вида инструментов.

Предстерилизационная подготовка.

Предстерилизационная подготовка складывается из обеззараживания, мытья и высушивания. Ей подвергают все виды инструментов. Вид и объём предстерилизационной обработки в недавнем прошлом зависел от степени инфицированности инструментов. Так, раньше существенно отличалась обработка инструментов после чистых операций (перевязок), гнойных операций, операций у больных, перенесших гепатит и относимых к группе риска по СПИДу. Однако в настоящее время, учитывая высокую опасность распространения ВИЧ-инфекции, правила предстерилизационной подготовке ужесточены и приравнены к способам обработки инструментов, предусматривающих безусловную гарантию уничтожения ВИЧ. Следует отметить, что инструменты после гнойных операций, операций у больных, перенесших в течение последних 5 лет гепатит, а также при риске ВИЧ-инфекции обрабатывают отдельно от других. Все процедуры предстерилизационной обработки обязательно выполняют в перчатках!

Обеззараживание (дезинфекция).

Непосредственно после использования инструменты погружают в ёмкость с дезинфицирующими средствами (накопитель). При этом они должны быть полностью погружены в раствор. В качестве дезинфицирующих средств используют 3% раствор хлорамина (экспозиция 40–60 мин) или 6% раствор перекиси водорода (экспозиция 90 мин). После обеззараживания инструменты промывают проточной водой.

Мытьё.

Инструменты погружают в специальный моющий (щелочной) раствор, в его состав входят моющее средство (стиральный порошок), пероксид водорода и вода. Температура раствора 50 – 60 “C, экспозиция 20 мин. После замачивания инструменты моют щётками в том же растворе, а затем – в проточной воде.

Высушивание можно осуществить естественным путём. В последнее время, особенно при последующей стерилизации горячим воздухом, инструменты сушат в сухожаровом шкафу при температуре 80 C в течение 30 мин. После высушивания инструменты готовы к стерилизации.

Собственно стерилизация.

Выбор метода стерилизации в первую очередь зависит от вида хирургических инструментов.

Все хирургические инструменты можно условно разделить на три группы:

Металлические (режущие: скальпель, ножницы, хирургические иглы и пр.) (нережущие: шприцы, иглы, зажимы, пинцеты, крючки и пр.)

резиновые и пластмассовые (катетеры, зонды, дренажи, наконечники для клизм и пр.)

оптические (лапароскоп, гастроскоп, холедохоскоп, цистоскоп и пр.).

основной метод стерилизации нережущих металлических инструментов – стерилизация горячим воздухом в сухожаровом шкафу или автоклаве при стандартных режимах. Некоторые виды простых инструментов (пинцеты, зажимы и др.), предназначенные для одноразового использования, можно стерилизовать лучевым способом.

Стерилизация режущих металлических инструментов.

Проведение стерилизации режущих инструментов с помощью термических методов приводит к их затуплению и потере необходимых свойств. Основной метод стерилизации режущих инструментов – холодный химический способ с применением растворов антисептиков. Самыми лучшими способами стерилизации считают газовую стерилизацию (в озоново-воздушной камере) и лучевую стерилизацию в заводских условиях. Последний метод получил распространение при использовании одноразовых лезвий для скальпеля и хирургических игл (атравматический шовный материал).

Стерилизация медицинского инвентаря – длительная и трудоемкая процедура, без которой не может обойтись ни одна клиника. Указанная манипуляция проходит в три этапа, каждый из которых нуждается в особой внимательности и скрупулезности. С целью облегчения работы медиков и качественного уничтожения вредоносных микроорганизмов на сегодняшний день активно применяются стерилизационные медицинские приборы. Главные их достоинства – удобность и надежность.

Что должно обязательно стерилизоваться в медицинских учреждениях?

Рассматриваемый вид обработки применяется в отношении всех медицинских инструментов, контактирующих с раневой поверхностью, слизистыми покровами, кровью потерпевшего.

Указанный инструментарий состоит из следующих компонентов:

1. Перевязочного материала.
2. Лабораторной посуды: мензурок, стеклянных тонких трубочек, колбочек.
3. Операционного белья.
4. Иголок.
5. Резиновых изделий, используемых в медицинских целях: катетеров, перчаток, зондов, дренажных трубок.
6. Приспособлений, которые касаются поврежденных поверхностей организма.
7. Мелких стоматологических инструментов: боров, каналонаполнителей, дрильборов.
8. Приборов и аппаратуры для диагностических мероприятий.

Видео: Чистка и дезинфекция конвенциональных медицинских инструментов

Основные этапы стерилизации

Рассматриваемая процедура проводится в три этапа, последовательность которых должна соблюдаться в обязательном порядке:

1.Дезинфекция

Предусматривает ликвидацию вредоносных микроорганизмов в помещении, на инструментах и расходных материалах, которые используются в клиниках. При этом, дезинфицируют не только полы, стены и жесткую мебель, но также воздух, средства ухода за пациентами, санитарно-технические устройства и т.д.

• Пребывание в больнице человека с инфекционным недугом – повод для проведения очаговой дезинфекции .
• В целом же, еженедельно в операционных и манипуляционных кабинетах осуществляет генеральную уборку. Влажная уборка помещения осуществляется каждый день. Подобный комплекс мероприятий именуют профилактической дезинфекцией .

Исходя из назначения инвентаря, который вступает в контакт с кожным покровом, дезинфекция бывает трех видов:

1. Низкого уровня . Показана для обеззараживания приспособлений, что контактируют с неповрежденной кожей. Основные средства данного вида дезинфекции – препараты, содержащие хлор, фенол, этиловый или изопропиловый спирт, а также йодофоры. Указанные препараты не способны уничтожать продукты размножения грибов и бактерий, а также мелкие вирусы не липидной природы. С остальной группой болезнетворных микрочастиц они справляются хорошо.
2. Высокого уровня . Применяется для обработки медицинских приспособлений, которые используют для контакта с кровью, растворами для инъекций, кровеносными сосудами, чистыми тканями организма. Главными компонентами указанного вида дезинфекции являются 6-процентный раствор перекиси водорода, соединения альдегида и хлора, а также препараты, включающие надуксусную кислоту. Подобные средства устраняют все болезнетворные микрочастицы, кроме продуктов размножения грибков.
3. Промежуточного уровня . Дает возможность справиться с крупными липидными вирусами, вегетативными формами бактерий. Нелипидные микровирусы, продукты размножения бактерий устойчивы к подобной очистке. Дезинфекцию промежуточного уровня применяют в отношении инструментов, которые вступают в контакт со слизистыми оболочками либо с рваными кожными покровами.

Дезинфекция осуществляется несколькими способами:

• Механическим. Предусматривает протирание поверхностей влажной тряпкой, стирку операционного и постельного белья, обработку мебели и пола пылесосом. Кроме того, обязательным является регулярное проветривание всех помещений в клинике.
• Биологическим. Для ликвидации тех или иных вредоносных микроорганизмов обращаются к бактериофагам. Указанные антагонисты обладают узким спектром действия, в связи с чем их используют в основном для дезинфекции помещения и твердых поверхностей.
• Физическим. На объекты, которые подлежат обеззараживанию, воздействуют высокими температурами. Это может быть кипячение в растворе дистиллированной воды с содой, обработка паром, сухим воздухом. Данный метод не является опасным для сотрудников клиники и отличается своей надежностью.
• Химическим. Наиболее популярный метод дезинфекции в медучреждениях. Может быть весьма агрессивным для тех, кто работает с химическими реагентами, поэтому изделия, подлежащие дезинфекции рекомендуется располагать на решетках в камерах. Суть рассматриваемой методики заключается в погружении мединвентаря в обеззараживающие химрастворы. Емкость, в которую заливают указанные препараты, должна быть изготовлена из пластмассы, стекла, либо покрыта слоем эмали. Сами дезсредства нужно хранить в плотно закрытых емкостях с указанием точного названия препарата, даты его изготовления и сроков применения. При работе с такими веществами медсестрам необходимо надевать респираторную маску, очки и перчатки. Помещение в это время должно вентилироваться либо проветриваться. Не допускается разбавлять те или иные химические растворы теплой/горячей водой: это спровоцирует усиленное испарение вредных для организма веществ.

Все средства химической дезинфекции, в силу своего состава, условно делятся на 7 групп:

1. Кислородосодержащие препараты. Активным компонентом здесь выступает кислород. Наиболее ярким представителем данной группы является перекись водорода.
2. Гуанидсодержащие средства. Хорошо справляются с ликвидацией множества разнообразных патогенных бактерий. Они представлены следующими изделиями: Гибитан, Лизетол АФ, Фогуцид и т.д.
3. Галогеносодержащие вещества , основу которых составляют йод, хлор, а также бром.
4. Поверхностно-активные вещества (ПАВы), что не приводят к образованию ржавчины на металлах со временем. Благодаря их свойствам возможно совмещать процедуру дезинфекции и предстерилазционной очистки.
5. Спирты. Показаны для обработки рабочих поверхностей, медтехники, а также для кожных покровов.
6. Препараты, содержащие янтарный или глутаровый альдегид . Эффективно справляются с бактериями, вирусами, спорами, макроорганизмами.
7. Средства на основе фенола. Зачастую их применяют для очищения помещений, где находятся больные туберкулезом.

Загрязненный рабочий инвентарь сразу после применения погружают специальную емкость, которая залита химическим обеззараживающим раствором. Высота жидкости над уровнем инструмента должна составлять не менее 1 см. При значительных загрязнениях очистку осуществляют дважды. Дезинфекция заканчивается промывкой медицинского инвентаря под проточной водой. Если присутствуют загрязнения на данном этапе, их устраняют механически, посредством ерша, салфетки либо щетки.

2. Предстерилазационная очистка (ПСО)

Она необходима для качественной обработки инструментария, который контактирует с раневыми поверхностями, слизистыми оболочками.

Указанные приспособления предварительно разбирают и погружают в емкость с заранее приготовленным раствором. Для подобной методики изготавливают специальные растворы — или же применяют уже готовые дезинфектанты. В первом случае используют воду, перекись водорода, а также моющие препараты.

Качество очищения мединструмента оценивают путем проведения специальных проб на трех единицах изделий.

3. Непосредственная стерилизация

Является обязательной методикой обработки инструментов, которые соприкасаются с чистыми тканями организма, кровеносными сосудами, а также кровью.

Полная стерилизация осуществляется при помощи стерилизаторов – специального оборудования.

Различают три основных методики стерилизации:

1) Термическая

Подразделяется на:

• Паровую , с применением автоклава. Обеззараживание достигается путем воздействия пара под избыточным давлением. Возбудители болезни здесь начинают гибнуть уже при температуре 120С. Указанная процедура может длиться от 15 минут до 1 часа. Время очистки зависит от материала, из которого изготовлено изделие и степени его загрязнения.
• Воздушную , при помощи сухожарового шкафа. Используется для обеззараживания предметов, которые в следствие специфической структуры не могут поддаваться воздействию газов и паров. Вредоносные микроорганизмы в таких устройствах ликвидируются под влиянием высоких температур (180 С).
• Микроволновую . Подходит для очистки небольшого количества хирургического либо лабораторного инвентаря. Принцип стерилизации заключается в помещении объектов в условия частичного вакуума, и воздействии на них микроволнами. Подобная манипуляция занимается всего 30 секунд.

2) Химическая

Бывает нескольких видов:

1. Плазменная. Предусматривает использование 20-процентного пероксида водорода.
2. Стерилизация озоном. Длится около 60 минут.
3. Очистка с применением паров химических соединений. Для подобных целей могут использоваться:

• Окись этилена с бромистым метилом: для стерилизации резиновых, стеклянных, металлических, полимерных изделий, а также медоптики, кардиостимуляторов. Для подобного способа обеззараживания используют газовый стерилизатор.
• Пары формальдегида и воды. При температуре 75С в стационарном формалиновом стерилизаторе на протяжении 5 часов обрабатывают инвентарь из резины, стекла, металла, полимера.

3) Радиоактивная

Основана на принципе трансформации ионной энергии в химическую и тепловую. Это благоприятствует разрушению ДНК возбудителей болезней, что останавливает процесс размножения патогенных микрочастиц, и полностью прекращает их существование.

Данный метод зачастую используют в заводских условиях, в ходе массового выпуска медицинского инвентаря (к примеру, разовые шприцы).

Видео: Процесс дезинфекции и стерилизации медицинских инструментов

Все методы стерилизации инструментов, перевязочного материала и т.д. в медицине сегодня – необходимая аппаратура

На сегодняшний день, в медицинской практике чаще всего применяют стерилизаторы, которые производят очистку посредством горячего воздуха, либо пара.

Каждый из них имеет свои недостатки и преимущества.

1. Сухой метод стерилизации негативно влияет на прочность стекла и металла. Страдают также мелкие стоматологические приспособления: при воздействии на них температурами свыше 160 С они притупляются и становятся хрупкими. Еще одним негативным моментом рассматриваемого вида обеззараживания является невозможность контролировать качество очистки предметов.
2. На сегодняшний день наиболее оперативным и качественным средством обеззараживания является паровая методика . С ее помощью можно обрабатывать инструменты, которые чувствительны к высоким температурам. Посредством указанных приборов медицинские изделия проходят все три этапа стерилизации. Пар для стерилизации в автоклаве вырабатывается посредством кипячения воды в котле. В стерилизационную камеру, куда помещают загрязненные предметы, поступает указанный пар. С целью поддержания нормального давления предусмотрен предохранительный клапан. Кроме того, автоклав укомплектован манометром и термометром для измерения соответственно давления паровой массы и температуры.

Современные автоклавы бывают трех классов:

• Оборудование класса N. Хорошо справляется с очищением неупакованных материалов из ткани, а также со сплошным гладким медицинским инвентарем.
• Устройства класса S. Могут применяться для обеззараживания объектов из ткани, что упакованы, а также для пористых и гладких инструментов.
• Автоклавы класса В. Являются универсальным прибором для стерилизации, так как подходят для любого медицинского инвентаря. Они особенно популярны в стоматологических клиниках.

C целью облегчения и ускорения процесса стерилизации, рынок медицинских товаров предлагает следующее оборудование:

1. Приборы для тщательной упаковки инвентаря перед проведением стерилизации.
2. Моечные аппараты для дезинфекции . Помогают избавиться от видимых загрязнений. Их главная цель – предстерилизационная обработка медицинских инструментов.
3. Дистилляторы. Актуальны для медицинских учреждений, которые активно практикуют автоклавы, — для паровой очистки применяют дистиллированную воду.